最小真核基因组的构建是基因组学中的重要议题，被称为该领域的“圣杯”。通过基因组的精简，去除冗余基因，可为认识生命的起源和进化提供重要线索，有助于深化对基因组功能组成和运转方式的认识。2016年，最小原核基因组已由J. Craig Venter团队构建出来。面对更为复杂的真核生物基因组，如何构建其最小基因组是合成基因组学领域的下一个重大挑战。

1月4日，中国科学院深圳先进技术研究院（以下简称深圳先进院）戴俊彪团队的最新研究成果在《基因组生物学》发表，团队开发出一种称为SGC（SCRaMbLE-based genome compaction）的人工基因组的高效简化策略，并以此方法成功删除了第十二号染色体左臂中超过一半的非必需基因，为第一个最小真核基因组的构建及理解真核生命的核心组成奠定了理论和技术基础。

Sc2.0项目是世界上第一个真核基因组合成项目，已经成功构建了六条染色体。相对于野生型基因组，合成酵母基因组的一个特征是在酵母基因组中系统性地插入了大量的序列特异性重组位点loxPsym，这使得在Cre重组酶表达时，合成基因组可以发生倒置、缺失、重复和易位等各种重排（SCRaMbLE系统），为最小酵母基因组的构建提供了可能，研究团队对此展开了深入的研究，最终成功实现了真核合成染色体的高效精简。

SCRaMbLE所产生的基因组重排是随机的，删除是其中的一种形式，为了确保SCRaMbLE之后的基因组都发生序列删除，研究者们通过选取合适的插入位点，将选择性标记——URA3基因插入到了合成的染色体中；然后通过药物对该基因的反筛作用，富集了该基因所在片段被删除的菌株。此外，SCRaMbLE所介导的删除是以两个loxPsym位点之间的序列为基本单位的，因此如果两个loxPsym位点之间包含必需基因，则该片段内的其他非必需基因也无法被删除，如何覆盖到这些非必需基因，实现无偏删除？对此，研究者们利用酿酒酵母同源重组技术，以eArray的形式为酵母细胞提供了必需基因的额外拷贝。在eArray存在的情况下，单次SCRaMbLE的删除能力提升了3倍左右，甚至可以一次删除合成序列上超过1/3的基因。

为实现基因组的逐步简化，直致最小化，研究团队建立了合成基因组的连续删减流程，通过3次的连续删减，在保证菌株存活的前提下，最终删除了合成序列上65个非必需基因中的39个，成功将左臂的长度缩短了近100 kbp（原总长度为170 kbp）。

“通过这一系列的研究，我们成功地开发了基于必需基因阵列的合成染色体迭代删减技术，这对合成酵母的基因组精简而言是一种通用且高效的工具，将为第一个真核最小基因组的构建奠定技术基础。”罗周卿表示。

据了解，该项研究是Sc3.0国际合作项目中的试点项目之一，由曼彻斯特大学、纽约大学及深圳先进院共同发起，由GP-write中国中心支持，旨在构建首个真核最小基因组，该国际合作倡议也于近期发表于《基因组生物学》。“通过Sc3.0的研究，我们将对酵母基因组展开深度设计，探索基因排布、功能组成及非编码序列等对基因组活性的系统性影响，为生命的从头设计奠定理论和技术基础。”戴俊彪表示。