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肺癌细胞释放的“特洛伊木马”:外泌体如何“策反”T细胞? | MDPI Proteomes |
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论文标题:肺腺癌和鳞状细胞癌来源的小细胞外囊泡改变T细胞因子表达并调节sEV生物发生中的蛋白质谱
论文链接:https://www.mdpi.com/2227-7382/13/2/15
期刊名:Proteomes
期刊主页:https://www.mdpi.com/journal/proteomes
尽管免疫治疗取得了显著进展,但非小细胞肺癌(NSCLC)的临床成功率仍然有限,部分原因可能是晚期癌症患者体内存在严重的免疫系统异常。肿瘤细胞释放的小细胞外囊泡(sEVs)是介导免疫逃逸的重要机制之一。
Proteomes 发表的一项研究,从肺腺癌(ADC)和肺鳞状细胞癌(SCC)细胞系中分离sEVs,系统探究了它们对T细胞免疫功能的调节作用及其分子机制。
一、研究背景
肺癌是全球癌症相关死亡的主要原因。非小细胞肺癌(NSCLC)约占所有肺癌病例的80%,主要亚型包括腺癌(ADC)和鳞状细胞癌(SCC)。尽管免疫治疗不断发展,肿瘤微环境中复杂的免疫学改变仍是导致临床效果不佳的主要原因。
肿瘤细胞会大量产生并释放sEVs(根据国际细胞外囊泡学会MISEV指南,直径30-200 nm的囊泡统称为小细胞外囊泡),这些囊泡携带与亲代细胞相似的分子成分,包括蛋白质、核酸等。已有研究表明,肿瘤来源的sEVs可以携带多种免疫抑制信号,导致T细胞功能障碍。然而,不同NSCLC亚型来源的sEVs如何影响T细胞活性,目前尚不清楚。
二、研究方法
细胞模型:
• 肺腺癌细胞系A549
• 肺鳞状细胞癌细胞系SKMES1
• T细胞系Jurkat E6.1
sEVs分离与表征:采用沉淀法从细胞培养基中分离sEVs,通过纳米颗粒追踪分析(NTA)和透射电子显微镜(TEM)表征粒径和形态,Western blot验证sEVs标志物(CD9、CD63,Calnexin作为阴性对照)。
sEVs摄取与细胞活力:使用PKH67荧光标记sEVs,与T细胞共培养后通过荧光显微镜观察摄取情况;采用Resazurin法评估细胞活力。
基因表达分析:通过实时荧光定量PCR检测免疫相关基因(IL10、TGFB1、BAX、GZMB、IL2、IL6、KI67、BCL2、TNFA)的表达变化。
蛋白质组学分析:采用液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)进行无标定量蛋白质组学分析,鉴定差异丰度蛋白(DAPs),并进行Gene Ontology(GO)功能富集分析。
三、研究结果
1. sEVs的表征
NTA显示A549细胞来源sEVs的粒径约为130 ± 20 nm,浓度为2.2 × 106颗粒/mL培养基。TEM观察到30-180 nm的球形结构。Western blot检测到CD9和CD63阳性信号,Calnexin阴性,证实了sEVs的成功分离。

图1. sEVs的表征。
2. sEVs的摄取与T细胞活力
荧光显微镜观察显示,PKH67标记的sEVs(绿色)被T细胞内化,分布在细胞质中。Resazurin活力测定表明,在sEVs处理后的前2小时,T细胞活力降低,随后趋于平衡。

图2. (a) T细胞摄取A549来源的小细胞外囊泡(sEVs)。sEVs标记为绿色,细胞核为蓝色,质膜为红色。细胞质中出现的绿色荧光表明PKH标记的sEVs已被成功内化。(b) 癌症来源的sEVs对T细胞活力的影响。使用从A549和SKMES1细胞中分离出的sEVs处理T细胞24小时,并通过刃天青(resazurin)测定法评估细胞活力。记录加入刃天青后最初4小时内的荧光信号。缩写:T,Jurkat E6.1细胞;T + A549_Exo,经A549来源sEVs处理的Jurkat E6.1细胞;T + SKMES_Exo,经SKMES1来源sEVs处理的Jurkat E6.1细胞(星号对应p值为0.0011)。
3. T细胞基因表达的变化
实时荧光定量PCR结果显示,肺腺癌和鳞癌来源的sEVs处理后,T细胞中多个关键基因的表达发生显著变化:
• 下调的基因:Ki67(增殖标志物)、BCL2和BAX(凋亡相关)、TNFα和IL6(炎性细胞因子)、TGFβ和IL10(免疫抑制性细胞因子)均显著下调(p < 0.0001)
• 上调的基因:GZMB(颗粒酶B)和IL2(白细胞介素-2)在两组中均上调
4. 差异丰度蛋白(DAPs)分析
蛋白质组学分析鉴定出:
• 肺腺癌sEVs处理T细胞:39个DAPs
• 肺鳞癌sEVs处理T细胞:276个DAPs
• 两组共有的DAPs:19个
GO功能富集分析显示:
• 肺腺癌组特有的DAPs富集于NAD代谢过程、核苷酸磷酸化、氧化还原酶活性、细胞外基质(ECM)结合、清道夫受体活性等
• 肺鳞癌组特有的DAPs富集于mRNA分解代谢与稳定性调控、翻译调控、氨基酸代谢过程、钙黏蛋白结合、未折叠蛋白结合等
• 共有蛋白的细胞组分分析显示这些蛋白定位于细胞质和细胞外腔,提示它们可能被T细胞进一步以sEV形式释放
四、研究结论
本研究证实,肺癌细胞来源的sEVs能够被T细胞有效摄取,并调节T细胞的细胞因子谱和活性。具体发现包括:
• 肺癌sEVs处理后,T细胞的Ki67、BCL2、BAX、TNFα、IL6、TGFβ和IL10表达下调,提示细胞增殖减少、凋亡失调、炎症信号和免疫抑制信号受损
• GZMB和IL2的上调提示细胞毒性潜力保留但T细胞激活可能功能失调
• 蛋白质组学分析揭示了两组T细胞中39个(肺腺癌组)和276个(肺鳞癌组)DAPs,其中19个共有
• GO分析显示这些DAPs参与sEV生物发生、代谢通路和调控功能
• 细胞质定位提示这些蛋白可能被T细胞进一步以sEV形式释放
这些发现揭示了肺癌来源sEVs通过免疫调节信号调控T细胞活性的分子机制,为理解肿瘤免疫调控机制和发现新的治疗靶点提供了线索。
五、延伸阅读
如果您对外泌体在疾病与再生医学中的作用感兴趣,本期推荐的两篇文章也值得一读:
1. 细胞外囊泡蛋白质组学在角膜再生医学中的应用
https://www.mdpi.com/2227-7382/13/4/49
该综述全面考察了EVs在角膜再生医学中的蛋白质组学景观,重点关注间充质干细胞(MSCs)来源的EVs。EVs通过调节炎症、支持上皮和基质再生、促进神经修复,在角膜愈合中发挥作用,其治疗潜力很大程度上归因于所携带的生长因子、细胞因子和参与细胞外基质重塑的蛋白。
核心内容:
• EVs在角膜再生中的作用机制:支持上皮损伤修复、调节免疫反应和抗纤维化、抑制血管生成、促进神经再生
• 蛋白质组学技术:LC-MS/MS用于鉴定和表征EVs的蛋白内容物
• 来源差异:骨髓、脂肪组织、脐带等不同MSC来源的EVs具有不同的蛋白质组学特征
• 预处理影响:缺氧、炎症等环境因素可改变EVs的蛋白组成
• 关键蛋白:参与血管调节(VEGF、MMP-2)、抗纤维化(decorin、TIMP-2)、神经保护(NGF、BDNF)和炎症调节(TGF-β、IL-10)的蛋白

图2. 细胞外囊泡(EVs)在角膜再生中潜在作用机制的示意图。
2. 人顶体蛋白质组中的固有无序与相分离协调胞吐作用、运动和染色质重塑
https://www.mdpi.com/2227-7382/13/2/16
本研究通过生物信息学方法,分析了人顶体蛋白质组中250种蛋白质的固有无序区域和液-液相分离(LLPS)倾向。研究发现约81%的顶体蛋白具有中到高水平的无序结构,这些无序区域通过促进快速、多价的相互作用和动态分子组装,在囊泡融合、酶释放等过程中发挥关键作用。约30%的顶体蛋白是LLPS的高概率驱动者。该研究还发现,固有无序与LLPS倾向之间存在显著的正相关关系(p < 0.0001, R2 = 0.649)。虽然该研究未直接以外泌体为主题,但其揭示的蛋白质无序性和相分离机制,与EVs生物发生和货物分选过程中的动态组装机制具有重要的理论关联。

图16. 肉豆蔻酰化丙氨酸富集C激酶底物(MARCKS,UniProt ID: P29966)的功能性无序分析。(A) 由RIDAO生成的固有无序分布图。(B) 由D2P2生成的功能性无序分布图。(C) 置信度阈值为0.4时的MARCKS蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络。
Proteomes 期刊介绍
主编:Jens R. Coorssen, Institute for Globally Distributed Open Research and Education (IGDORE), Canada; Matthew P. Padula, The University of Technology Sydney, Australia
期刊专注于蛋白质组分析的各个方面,特别关注蛋白质组在蛋白质形式(proteoforms)、功能性生物学单元以及标准氨基酸序列水平上的表征和定量。目前已被Scopus、ESCI (Web of Science)、PubMed等数据库收录。
2025 Impact Factor: 4.3
2025 CiteScore: 6.4
Time to First Decision: 27.9 Days
Acceptance to Publication: 5.5 Days
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